Методы изучения простейших

Методы обнаружения простейших. Микроскопия простейших. Материал для выявления простейших. Выделение простейших. Серологические исследования при диагностике простейших

Методы изучения простейших

Оглавление темы “Методы обнаружения вирусов. Методы диагностики микозов ( грибковых заболеваний ). Методы обнаружения простейших.”:
1. Биологические методы диагностики бактерий. Животные при диагностике инфекций. Какие животные используются для диагностики инфекций?.
2. Методы обнаружения вирусов. Лабораторные методы при диагностике вирусных инфекций.

Забор материала для выявления вирусов. Культуры клеток для выявления вирусов.
3. Культуры органов для обнаружения вирусов. Куриные эмбрионы при диагностике вирусных инфекций. Заражение вирусом куриного эмбриона. Методы заражения вирусом куриного эмбриона.
4. Животные модели для обнаружения вирусов. Идентификация вирусов. Качественное определение вирусов.

Цитопатические эффекты вирусов. Бляшкообразование вируса. Тельца включений вирусов.
5. Отсутствие цитопатического эффекта вируса. Феномен гемадсорбции вирусов. Цветная реакция. Экспресс-диагностика вирусной инфекции.
6. Количественное определение вирусов. Определение инфекционности вирусов. Выявление вирусных антигенов ( Аг ). Выявление вирусных частиц.

Морфология вирусов.
7. Серологические методы диагностики вирусных инфекций. Торможение гемагглютинации. Торможение цитопатического эффекта интерференцией вирусов. Прямая иммунофлюоресценция. Иммуноэлектронная микроскопия.
8. Выявление противовирусных антител ( AT ) в сыворотке крови. РТГА. РСК. РИФ. Иммуносорбционные методы выявления противовирусных антител.

9. Выявление вирусных антигенов ( Аг ). ИФА. Гибридизация ДНК. ПЦР. Методы диагностики микозов ( грибковых заболеваний ).
10. Выделение грибов. Неселективные среды для грибов. Селективные среды для грибов. Выявление противогрибковых антител ( AT ). Выявление грибковых антигенов ( Аг ).
11. Методы обнаружения простейших. Микроскопия простейших.

Материал для выявления простейших. Выделение простейших. Серологические исследования при диагностике простейших.

Выявление патогенных простейших основано на идентификации морфологических особенностей возбудителя и в значительной степени зависит от правильного взятия клинического материала и адекватной фиксации.

Ошибки при проведении этих мероприятий могут привести к получению ошибочных результатов.

Микроскопия простейших

Поиск патогенных простейших обычно проводят в субстратах, являющихся средой их обитания — испражнениях, крови.

Микроскопия простейших в испражнениях

Для адекватного выявления паразитов в ЖКТ необходимо исследовать не менее трёх проб, полученных в течение 10 сут. Для диагностики амебиаза этого может оказаться недостаточным, и при подозрении на это заболевание необходимо исследовать шесть проб, полученных в течение 14 сут.

Следует избегать попадания в материал воды или мочи, губительно действующих на простейших. Если больному в диагностических целях вводили внутрь сульфат бария, минеральное масло, препараты висмута или проводили специфическую терапию, то забор испражнений следует проводить не ранее 8-х суток после последнего введения.

Для выявления трофозоитов (подвижных форм) жидкие испражнения необходимо исследовать в течение 30 мин после получения: при более оформленном стуле эти исследования можно провести в течение часа; на более поздних сроках трофозоиты обычно разрушаются.

При невозможности своевременного обследования в образцы вносят фиксирующие растворы, сохраняющие морфологию взрослых особей.

Макроскопическое исследование может выявить примесь крови и слизи (частый диагностический признак амебиаза). Выявление же самих паразитов проводят при светооптической микроскопии влажных нативных препаратов либо в окрашенных мазках. Микроскопия нативных препаратов.

Небольшое количество испражнений наносят на предметное стекло, диспергируют в капле физиологического раствора, накладывают покровное стекло и исследуют под микроскопом на наличие трофозоитов (в жидкие испражнения физиологический раствор не вносят). Нативные препараты можно слегка докрашивать раствором Люголя, что облегчает выявление цист.

Особенно внимательно необходимо исследовать кровь и слизь; желательно готовить отдельные препараты, не контаминированные (по возможности) фекальными массами. Методы накопления. Для выявления паразитов, присутствующих в незначительных количествах, применяют различные методы накопления. При исследовании кала наиболее часто используют седиментационный метод.

Для исследования забирают каплю надосадочной жидкости, наносят на предметное стекло, где смешивают с равным объёмом физиологического раствора, накрывают покровным стеклом и микроскопируют.

Смесь на предметном стекле можно подкрашивать раствором Люголя, раствор разрушает трофозоиты, но позволяет хорошо визуализировать ядра и включения гликогена в цистах. Микроскопия окрашеных мазков позволяет не только выявлять, но и дифференцировать простейших; окраску наиболее часто проводят гематоксилином и эозином по Хайденхайну.

Микроскопия простейших в крови

Капиллярную или венозную кровь помещают в пробирку с антикоагулянтом (например, с этилендиаминтетрауксусной кислотой); исследования необходимо проводить по возможности быстро. Обнаружение простейших проводят микроскопией толстых и тонких мазков.

Толстые мазки готовят из больших объёмов крови, нанесённых на предметное стекло; их обычно окрашивают по Романовскому-Гимзе, чего обычно бывает вполне достаточно для выявления паразитов.

Тонкие мазки готовят для облегчения морфологической дифференцировки паразитов крови, мазки обычно окрашивают по Романовскому-Гимзе или Райту.

Образцы различных тканей

Образцы различных тканей отбирают, учитывая биологию паразита и его типичную локализацию. Образцы кожных покровов окрашивают обычными гистологическими красителями и микроскопируют.

Биоптаты лимфатических узлов, селезёнки, печени, аспираты костного мозга и СМЖ забирают при подозрении на трипаносомозы или лейшманиозы. Часть образцов микроскопируют в виде нативных мазкоз, часть окрашивают по Романбвскому-Гимзе или Райту.

Также возможно окрашивание образцов различными гистологическими красителями, наиболее употребляемыми для изготовления препаратов из исследуемых тканей.

Выделение простейших

Выделение возбудителей проводят только в специализированных лабораториях, институтах и центрах; проводить эти мероприятия в обычных бактериологических лабораториях недопустимо. На специальных средах и культурах тканей можно выделять и культивировать практически все патогенные простейшие.

Серологические исследования при диагностике простейших

Серологические исследования — наиболее распространённые и доступные диагностические методы. Их часто проводят при подозрении на токсоплазмоз, амебиаз (РИГА, латекс-агглютинация), лейшманиозы (РНГА), трипаносомозы (РНГА, РСК) и т.д.

– Вернуться в оглавление раздела “Микробиология.”

Источник: https://meduniver.com/Medical/Microbiology/360.html

II. МЕТОДЫ ОБНАРУЖЕНИЯ И ИССЛЕДОВАНИЯ ПРОСТЕЙШИХ

Методы изучения простейших

Кишечные простейшие представлены амебами и жгутиковыми. Выделяют две диагностические стадии: вегетативная стадия или трофозоит и покоящаяся стадия или циста.

Как первая, так и вторая стадии могут выделяться с фекалиями. Трофозоиты обычно обнаруживаются в жидких или полужидких фекалиях; цисты обычно встречаются в оформленном стуле.

Однако как одна, так и другая стадии могут обнаруживаться в одной и той же пробе фекалий.

Трофозоиты и цисты можно наблюдать и в нативных препаратах фекалий с физиологическим раствором. В ряде случаев видовая идентификация может потребовать исследования окрашенных препаратов.

1. ИССЛЕДОВАНИЕ ИСПРАЖНЕНИЙ.

Испражнения (кал) исследуют с целью обнаружения простейших кишечника. Все больные острыми и хроническими кишечными заболеваниями, в первую очередь при наличии крови и слизи в стуле, должны подвергаться лабораторному обследованию на зараженность простейшими.

Движение простейших – один из самых характерных признаков, который позволяет поставить правильных диагноз.

Поэтому основное правило – исследование только свежего материала, не позже, чем через 20-30 мин после его выделения.

При невозможности немедленного исследования испражнения помещают в консервант (не заменяет нативных мазков). Исследование на цисты простейших допускается в течение суток.

В первую очередь выбирают и исследуют неоформленные фекалии с патологическими примесями, так как в них можно обнаружить подвижные формы патогенных простейших.

В плотном оформленном стуле содержатся только цисты. Они более устойчивы, чем вегетативные формы, поэтому оформленный кал можно исследовать и через более поздние сроки, но, как правило, в день взятия.

А). Исследование мазков фекалий. Обязательным является исследование нативного мазка и мазка, окрашенного раствором Люголя.

Нативный мазок. Препарат готовится на предметном стекле без добавления изотонического раствора хлорида натрия. В нативном мазке обнаруживают подвижные формы простейших, по особенностям движения можно диагностировать отдельные виды.

Окраска раствором Люголя. Цисты отличаются постоянной формой и наличием оболочек. Строение цист видно плохо, не просматриваются ядра. Поэтому исследуют и мазок, окрашенный раствором Люголя.

Цисты окрашиваются в золотичто-коричневый цвет. На фоне цитоплазма заметны ядра, видны их строение и число. Хорошо виден гликоген, окрашивающийся в разные оттенки коричневого цвета.

При окраске раствором Люголя вегетативные формы погибают и определяются с трудом.

Б). Методы обогащения или накопления цист. Применяются только с целью обнаружения цист. Для исследования жидких фекалий, в которых, как правило, обнаруживаются вегетативные формы простейших, эти методы не пригодны.

Метод всплывания.

При смешивании материала, содержащего цисты, с жидкостями, имеющими бóльшую относительную плотность, чем цисты, последние всплывают и находятся в поверхностной пленке.

Предварительно отмывают цисты от фекалий, затем цетрифугируют. После этого к осадку добавляют 33% раствор сульфата цинка. Центрифугируют, исследуют поверхностную пленку, которую снимают петлей.

Метод формалин-эфирного обогащения. При обработке фекалий по этому методу происходит отделение и концентрация цист простейших кишечника.

2. ИССЛЕДОВАНИЕ КРОВИ.

С целью обнаружения гемопаразитов микроскопируют с иммерсионным маслом под большим увеличением мазок и толстую каплю крови.

Толстую каплю с отличие от мазка не фиксируют. Под влиянием водных красителей нефиксированные эритроциты гемолизируются, препарат становится прозрачным. Это ускоряет и облегчает обнаружение паразитов, так как в одном поле зрения можно исследовать гораздо больший объем крови, чем в мазке.

Окраску проводят по Романовскому-Гимзе. Раствор красителя должен быть слабо щелочной (рН 7,1-7,2). Для этой цели краску разводят физиологическим раствором. Правильно окрашенная толстая капля имеет фиолетовый цвет.

3. ИССЛЕДОВАНИЕ ВЫДЕЛЕНИЙ МОЧЕПОЛОВЫХ ПУТЕЙ.

Выделения мочеполовых путей исследуют для обнаружения мочеполовых трихомонад. Трихомонады легко отличить от лейкоцитов и других клеток по характерному движению, наличию жгутиков и ундулирующей мембраны. Более четко они видны при использовании темнопольной или фазово-контрастной микроскопии.

Просмотр нативных и окрашенных препаратов способствует эффективности лабораторного исследования.

4. ИССЛЕДОВАНИЕ ДРУГИХ БИОЛОГИЧЕСКИХ МАТЕРИАЛОВ.

А). Желчь и содержимое 12-перстной кишки, полученные при дуоденальном зондировании, осматривают и микроскопируют комочки слизи. Кроме того, материал центрифугируют, просматривают под микроскопом осадок. С помощью этого метода можно обнаружить вегетативные стадии лямблий.

Б). Спинномозговую жидкость, полученную при пункции, центрифугируют и исследуют осадок. Из осадка готовят нативные мазки, окрашивают их по Романовскому и микроскопируют. В препаратах можно обнаружить патогенных амеб, токсоплазм, трипаносом.

В). В гное, извлеченном при пункции абсцессов внутренних органов, микроскопически можно обранужить амеб. Из язв толстого кишечника получают отделяемое и немедленно микроскопируют – при этом можно выявить подвижные вегетативные стадии (эритрофаги) дизентерийной амебы.

Г). Мокроту исследуют в нативном мазке, а также окрашивают раствором Люголя. В мокроте можно обнаружить пневмоцисты, изредка ротовые амебу и трихомонаду.

Д). Костный мозг исследуют с целью обнаружения лейшманий и некоторых других простейших. Получают костный мозг при пункции грудины, гребня подвздошной или головки большеберцовой костей, готовят мазки на предметных стеклах и микроскопируют после окраски по-Романовскому.

Е). При кожных поражениях исследуют мазки в случае подозрения на кожный лейшманиоз. Исследуют кожу из области вокруг язвы и в зоне инфильтрата по краю язвы. Лейшмании обнаруживают в макрофагах, а также вне клеток в виде овальных или удлиненных телец размером 3-5 мкм.

Не рекомендуется брать материал непосредственно из язв, так как наличие микрофлоры и остатков разрушенных клеток затрудняют поиски лейшманий.

Ж). Лимфатические узлы пунктируют, полученный материал исследуют для приготовления окрашенных мазков, посева на питательные среды и биологической пробы с целью обнаружения лейшманий, трипаносом, токсоплазм.

З).

В некоторых случаях приходится исследовать кусочки органов или тканей, полученных во время операции (биопсия) или вскрытия (аутопсия). В частности, это необходимо для обнаружения токсоплазм и их цист в гистологических срезах из головного мозга, печени, селезенки, а также пневмоцист в препаратах из легких.

5. СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ.

Протозойные болезни сопровождаются выработкой иммунитета и появлением в сыворотке крови антител, на обнаружении которых основаны серологические методы исследований.

С указанной целью применяют

· реакцию связывания комплемента – РСК (токсоплазмоз),

· реакцию гемагглютинации – РГА (трихомоноз, токсоплазмоз),

· реакцию иммунофлюоресценции – РИФ (малярия, лейшманиоз, пневмоцистоз, амебиаз, токсоплазмоз),

· реакцию антител, меченных ферментами – РЭМА (лейшманиоз, токсоплазмоз, амебиаз, малярия) и др.

Например, на мазки-отпечатки с паразитом наносят капли исследуемой сыворотки в различных разведениях и затем – люминесцирующую сыворотку. Если в исследуемой сыворотке имелись антитела, то вокруг клеток паразита в мазке образуются светящиеся ореолы, наблюдаемые при микроскопии препаратов в люминесцентном микроскопе.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском гугл на сайте:

Источник: https://zdamsam.ru/b1955.html

Методы выявления и исследования простейших

Методы изучения простейших

Хранение и пересылка гельминтологического материала

Консервирование гельминтов

Гельминтов, собранных для длительного хранения, необ­ходимо консервировать.

Трематод и цестод вначале кладут в проточную воду и держат до их гибели. Затем их осторожно прессуют в 70%-ном спирте 30-40 мин в бактериологической чашке между предметными стеклами. Хранят трематод и цестод в 70%-ном этиловом спирте.

Нематод обычно промывают в воде. Филярий и легочных нематод промывают только в изотоническом растворе натрия хлори­да. Хранят нематод в жидкости Барбагалло (3%-ный раствор формалина в изотоническом растворе хлорида на­трия).

Акантоцефал (скребней), добытых при вскрытии, сначала помещают в воду, затем путем слабого прессования их пере­дних концов выдавливают хоботок, чтобы зафиксировать его в вытянутом положении. Фиксируют акантоцефал в 70%-ном этиловом спирте.

Ларвоцист цестод (цистицерков, ценурусов, эхинококков, альвеококков) фиксируют жидкостью Барбагалло. Органы, пораженные гельминтами, фиксируют в 10%-ном растворе формалина.

Во всех случаях количество фиксирующей жидкости дол­жно в 20 раз превышать объем фиксируемого материала.

Законсервированный и этикетированный материал хранят в плотно закупоренной посуде. Пробирки с гельминтами по­мещают в большую банку с притертой пробкой, наполненную консервирующей жидкостью. Пробирки можно ставить в не­сколько ярусов, перекладывая их слоем ваты. В таком виде гельминты сохраняются длительное время.

Пересылать гельминтологический материал можно в про­бирках или банках, хорошо упакованных в деревянные ящи­ки. Патологоанатомические препараты, фиксированные в 10%-ном растворе формалина, можно пересылать без жидкости. Орган, извлеченный из фиксирующей жидкости, заворачивают во влажную вату или марлю, помещают в целлофановый па­кет, а затем упаковывают в плотный ящик.

Пироплазмиды

Для выявления пироплазмид исследуют мазки крови от животных, больных или подозреваемых в заболевании.

В слу­чае гибели или вынужденного убоя больных животных мазки можно готовить из содержимого сосудов мозга, селезенки, пе­чени, почек, легких и пораженных лимфатических узлов.

Маз­ки готовят только из органов свежих трупов, так как в них паразиты быстро лизируются, особенно при высокой темпера­туре окружающей среды. В необходимых случаях принимают меры для исключения инфекционных болезней.

Используют хорошо обезжиренные стекла. Кровь для ис­следования лучше всего брать из периферических сосудов ушной раковины. Место взятия подготавливают путем выстригания волосяного покрова, затем проводят дезинфек­цию и обезжиривание этиловым спиртом, спиртом-эфи­ром. Инъекцию проводят иглой или подрезают ножницами кончик уха.

Каплю крови в диаметре не более 2-3 мм, выступающую на месте прокола, наносят на край обезжиренного предметно­го стекла и делают мазок. Очень важно мазок подготовить с первой капли крови, т.к. в ней значительно больше поражен­ных пироплазмидами эритроцитов. Следующий мазок необ­ходимо готовить из свежей капли крови после удаления сгус­тка с места инъекции.

Изготовление мазков необходимо проводить в период повышения температуры тела животных и появления первых клинических признаков, до введения специфических препара­тов. Мазки просушивают на воздухе 10-20 мин, избегая воз­действия прямых солнечных лучей и ограничивая доступ мух. Затем их подписывают иглой или простым карандашом, ука­зывая вид и номер животного, дату и место взятия.

Для фиксации используют метиловый спирт, которым за­ливают мазки крови на 3-5 мин, после этого стекла вынима­ют и высушивают 15-20 мин.

Можно фиксировать смесью равных частей абсолютного этилового спирта и эфира или только этиловым спиртом 15-20 мин.

Хорошо подготовленный мазок должен быть равномерным и тонким. В толстых мазках эритроциты и находящиеся в них паразиты обнаруживаются с большим трудом.

Окраску можно производить по Романовскому-Гимзе. Для приготовления рабочего раствора краски на 1 мл дистиллированной воды добавляют 1-3 капли основного раствора краски. Рабочий раствор лучше всего подслаивать под стекло с мазком.

В этих случаях на мазке не остается микрочастиц нерастворившейся краски, что облегчает при мик­роскопии поиск кольцевидных форм пироплазмид и диффе­ренциальную диагностику. Длительность прокрашивания маз­ков составляет 30-40 мин.

По истечении этого срока краску смывают, мазок промывают дистиллированной водой, высуши­вают и исследуют с использованием микроскопа. Качество окраски зависит от рН среды (оптимальной средой является 6,8-7,0). Правильно окрашенные мазки имеют розовый цвет с фиолетовым оттенком.

Эритроциты окрашиваются в розо­вый цвет, протоплазма лимфоцитов – в синий, их ядра – в темно-фиолетовый, протоплазма паразитов – в голубой, ку­сочки хроматина – в темно-красный или красный цвет.

Исследуют мазки под микроскопом с иммерсионной сис­темой.

Источник: https://studopedia.su/19_9055_metodi-viyavleniya-i-issledovaniya-prosteyshih.html

Методы обнаружения простейших

Методы изучения простейших

Выявление патогенных простейших основано на идентификации морфологических особенно-стей возбудителя и в значительной степени зависит от правильного взятия клинического мате-риала и адекватной фиксации. Ошибки при проведении этих мероприятий могут привести к получению ошибочных результатов.

Микроскопия

Поиск патогенных простейших обычно проводят в субстратах, являющихся средой их обита-ния — испражнениях, крови.

Испражнения

Дли адекватного выявлении паразитов в ЖКТ необходимо исследовать не менее трёх проб, полученных в течение 10 сут. Для диагностики амебиаза этого может оказаться недостаточ-но, и при подозрении на это заболевание необходимо исследовать шесть проб, полученных в течение 14 сут.

Следует избегать попадания в материал воды или мочи, губительно действу-ющих на простейших. Если больному в диагностических целях вводили внутрь сульфат ба-рия, минеральное масло, препараты висмута или проводили специфическую терапию, то за-бор испражнений следует проводить не ранее 8-х суток после последнего введения.

Для выяв-ления трофозоитов (подвижных форм) жидкие испражнения необходимо исследовать в течение 30 мин после получения; при более оформленном стуле эти исследования можно провести в течение часа; на более поздних сроках трофозоиты обычно разрушаются.

При невозможности своевременного обследования в образцы вносят фиксирующие растворы, сохраняющие мор-фологию взрослых особей.

Макроскопическое исследование может выявить примесь крови и слизи (частый диагнос-тический признак амебиаза). Выявление же самих паразитов проводят при светооптической микроскопии влажных нативных препаратов либо в окрашенных мазках.

Микроскопия нативных препаратов.

Небольшое количество испражнений наносят на пред-метное стекло, диспергируют в капле физиологического раствора, накладывают покровное стекло и исследуют под микроскопом на наличие трофозоитов (в жидкие испражнения физио-логический раствор не вносят).

Нативные препараты можно слегка докрашивать раствором Люголя, что облегчает выявление цист. Особенно внимательно необходимо исследовать кровь и слизь; желательно готовить отдельные препараты, не контаминированные (по возможнос-ти) фекальными массами.

Методы накопления. Для выявления паразитов, присутствующих в незначительных количе-ствах, применяют различные методы накопления. При исследовании кала наиболее часто используют седиментационный метод.

Для исследования забирают каплю надосадочной жидкости, наносят на предметное стекло, где смешивают с равным объёмом физиологическо-го раствора, накрывают покровным стеклом и микроскопируют.

Смесь на предметном стекле можно подкрашивать раствором Люголя, раствор разрушает трофозоиты, но позволяет хоро-шо визуализировать ядра и включения гликогена в цистах.

Микроскопия окрашеных мазков позволяет не только выявлять, но и дифференцировать простейших; окраску наиболее часто проводят гематоксилином и эозином по Хайденхайну.

Кровь

Капиллярную или венозную кровь помещают в пробирку с антикоагулянтом (например, с этилендиаминтетрауксусной кислотой); исследования необходимо проводить по возможности быстро. Обнаружение простейших проводят микроскопией толстых и тонких мазков.

Толстые мазки готовят из больших объёмов крови, нанесённых на предметное стекло; их обычно окрашивают по Романовскому-Гимзе, чего обычно бывает вполне достаточно для выявления паразитов.

Тонкие мазки готовят для облегчения морфологической дифференцировки паразитов крови, мазки обычно окрашивают по Романовскому-Гимзе или Райту.

Образцы различных тканей

Образцы различных тканей отбирают, учитывая биологию паразита и его типичную локали-зацию. Образцы кожных покровов окрашивают обычными гистологическими красителями и микроскопируют.

Биоптаты лимфатических узлов, селезёнки, печени, аспираты костного мозга и СМЖ забирают при подозрении на трипаносомозы или лейшманиозы. Часть образцов микро-скопируют в виде нативных мазков, часть окрашивают по Романовскому-Гимзе или Райту.

Также возможно окрашивание образцов различными гистологическими красителями, наиболее употребляемыми для изготовления препаратов из исследуемых тканей.

Выделение возбудителей

Выделение возбудителей проводят только в специализированных лабораториях, институтах и центрах; проводить эти мероприятия в обычных бактериологических лабораториях недопус-тимо. На специальных средах и культурах тканей можно выделять и культивировать практи-чески все патогенные простейшие.

Серологические исследования

Серологические исследования — наиболее распространённые и доступные диагностические ме-тоды. Их часто проводят при подозрении на токсоплазмоз, амебиаз (РИГА, латекс-агглютинация), лейшманиозы (РИГА), трипаносомозы (РИГА, РСК) и т.д.

Подробно рассмотрев известные способы идентификации различных микроорганизмов, можно сделать вывод, что в основном это длительный и трудоемкий процесс, требующий достаточного набора знаний, оборудования и специальных условий.

Но не сотря на все трудности, диагностика необходима в целях идентификации микроорганизмов при установлении диагноза инфекционных заболеваний или иных вызванных микробами процессов и определения физиологических свойств культуры с другими целями, например при выборе химиотерапевтического препарата.

Но жаль, что пока не существует универсального метода для быстрого и качественного определения микроорганизма. Каждый метод подходит для определённого ряда инфекций и не годиться для определения возбудителей других заболеваний.

Также мало пока способов внелабораторной диагностики, потому что, например, часто необходимо наличие чистой культуры, что практически невозможно создать в полевых условиях.

В мире постоянно появляются или обнаруживаются новые неизвестные микроорганизмы и, возможно, от скорости их идентификации будет зависеть жизнь многих людей. Из всего этого можно сделать вывод, что человечеству необходимо уделять больше внимания развитию микробиологии.

1. Борисов Л.Б., Смирнова А.М., «Медицинская микробиология, вирусология, иммунология», Москва, 1994 г.

2. Гурина С.В., Соколова И.П., «Микробиология», СПб, 2000 г.

3. Красильников А.П., Романовская Т.Р., «Микробиологический словарь-справочник», Минск, 1999 г.

4. Поздеев О.К. под ред. Покровского В.И., «Медицинская микробиология», Москва, 2002 г.

5. Прозоркина Н.В., Рубашкина Л.А., «Основы микробиологии, вирусологии и иммунологии», Ростов-на-Дону, 2002 г.

Источник: https://studbooks.net/820555/meditsina/metody_obnaruzheniya_prosteyshih

ЭффектЛечения
Добавить комментарий